تأثير الأحماض العضوية أو البروبيوتيك وحدها أو في تركيبة على أداء النمو، هضم المغذيات، وأنشطة الإنزيم، مورفولوجيا الأمعاء والبكتيريا الأمعاء في الدجاج الفراري

تأثير الأحماض العضوية أو البروبيوتيك وحدها أو في تركيبة على أداء النمو، هضم المغذيات، وأنشطة الإنزيم، مورفولوجيا الأمعاء والبكتيريا الأمعاء في الدجاج الفراري

موجز

أجريت تجربة تغذية لتحديد تأثير الأحماض العضوية أو البروبيوتيك وحدها أو في تركيبة على أداء النمو، هضم المغذيات، نشاط الإنزيم، مورفولوجيا الأمعاء والبكتيريا الأمعاء في الدجاج المشوي (Ross308). تم استخدام تصميم معشاٍ تمامًا ، مع 1440 فراخ مبفرعبر أربعة علاجات وخمسة نسخ متماثل من 72 فراخ لكل منها. تم تغذية الفراخ في علاج التحكم على نظام غذائي للتحكم (CD) ، في حين تم استكمال القرص المضغوط بـ 0.2 جرام / كجم من الأحماض العضوية (CDOA) أو البروبيوتيك (CDP) أو مزيج من الأحماض العضوية والبروبيوتيك (CDOAP). تم تغذية جميع الكتاكيت libitum الإعلانية خلال تجربة التغذية على مدار 35 يوما. تم تخصيص ما مجموعه 20 فراخ عشوائيًا للأقفاص الأيضية الفردية لقياس قابلية هضم المغذيات (35-42 يومًا) وأنشطة الإنزيم الهضمي (42 يومًا). تم فحص مورفولوجيا الأمعاء والبكتيريا الأمعاء من 80 فراخ في نهاية التجربة. لم تكن هناك اختلافات كبيرة (p >.05) في تناول الأعلاف ، وزيادة وزن الجسم أو نسبة تحويل الأعلاف من الفراخ عبر العلاجات الغذائية الأربعة. وقد زادت قابلية هضم الألياف الخام زيادة كبيرة في الفراخ التي تتغذى على CDOA أو CDOAP بالنسبة إلى CD (p< .05). استخدام المواد الغذائية, من حيث أنشطة الإنزيم الهضمي والفضلات الممتلكات الحرارية, لم يتغير من قبل أي مكملات. وكان الكتاكيت تغذية على CDOAP أعلى بكثير ارتفاع الزغب الاثني عشر وعمق سرداب من الفراخ تغذية على CDOA (ع< .05). هذا العلاج الغذائي تحسن بشكل كبير البكتيريا الأمعاء عن طريق خفض عدد السكان من القولونية Escherichia وزيادة نسبة spp.: E. القولونية. استنادا ً إلى تحقيقاتنا، يمكن أن يزيد مكملات الأحماض العضوية والبروبيوتيك في الوجبات الغذائية للفراخ من القدرة على هضم الألياف الخام وارتفاع الفيلوس وتقليل الإشريكية القولونية المعوية دون إضعاف أداء النمو.

1 مقدمة

نظام الجهاز الهضمي (GI) له أهمية كبيرة في إنتاج الحيوانات ، مما يساهم في معدل النمو وكفاءة الأعلاف الناجحة. وتشارك صحة الأمعاء المثلى مباشرة في توازن البكتيريا الأمعاء، والسيطرة على الجهاز المناعي والتهابه، وحماية مسببات الأمراض المعوية والهضم وامتصاص المواد الغذائية. وفي حين أن الإنتاج العالمي للحوم الدواجن ينمو بسرعة، فإن استخدام المضادات الحيوية قد أدى إلى تحسن كبير في صحة الحيوان من خلال خفض معدل الإصابة بالأمراض (ديارا ومالوين، 2014)، وتعزيز النمو وكفاءة الأعلاف، فضلاً عن خفض الوفيات في إنتاج الفروج. ومع ذلك ، تم إدخال استخدامها دون اختبارات صارمة (غراهام ، بوبولند ، وSilbergeld ، 2007) ، وفي السنوات الأخيرة ، تغيرت طبيعة استخدام المضادات الحيوية في إنتاج الدواجن بشكل كبير بسبب المخاوف بشأن العواقب السلبية المحتملة على صحة الإنسان الناجمة عن استخدامها (Singer & Hofacre ، 2006). فعلى سبيل المثال، حظر الاتحاد الأوروبي استخدام المضادات الحيوية المعززة للنمو ويجري إعادة تقييم استخدامها في الولايات المتحدة. لذلك ، تركز الأبحاث الحالية على إيجاد بدائل للمضادات الحيوية في إنتاج المنتجات الغذائية الحيوانية المستدامة لتهدئة المخاوف البيئية ومخاوف سلامة الأغذية (Kogut & Arsenault ، 2016) بالإضافة إلى العثور على ملاحق بديلة ، مثل الأحماض العضوية والبروبيوتيك.

وقد أفيد أن تحمض الوجبات الغذائية باستخدام مختلف الأحماض العضوية الضعيفة مثل الفورميك، والفوماري، والبرونية، وحمض اللاكتيك وحامض البوربيك يقلل من الاستعمار من قبل مسببات الأمراض وإنتاج الأيض السام، فضلا عن تحسين هضم البروتين وCa، P، Mg وZn التي يمكن أن تكون بمثابة ركائز في التمثيل الغذائي الوسيط (حسن، محمد، يوسف، وحسن، 2010؛ كيرشجيسنر وروث، 1988). في تربية واسعة من الدجاج المشوي، يمكن للمكملات الحمضية العضوية في نظامهم الغذائي تعزيز استخدامها للمغذيات وتحسين نموها وكفاءة تحويل الأعلاف (Agboola، Omidiwura، أودو، بوبولا، وIyayi، 2015). الأحماض العضوية وأملاحها يمكن أن تخترق جدار الخلية البكتيريا وتعطيل فسيولوجيا طبيعية وكذلك الحد من درجة الحموضة من هاديسا، وزيادة إفراز البنكرياس ويمكن أيضا أن يكون لها آثار غذائية على الغشاء المخاطي للالجهاز الهضمي للحيوانات (عادل، بانداي، بهاتم، مير، وRehman، 2010). وعلاوة على ذلك، فإن إنشاء بيئة حمضية (درجة الحموضة 3.5-4.0) في أمعاء الدجاج المشوي بواسطة الأحماض العضوية يحبذ تطوير اللاكتوباكيلي ويمنع تكرار الإشريكية القولونية والسالمونيلا وغيرها من البكتيريا السلبية للغرام (تشودري وآخرون، 200Kopecký, HrnÄr, &amp; Weis, 2012), وبالتالي تحسين صحة الأمعاء ونسبة تحويل الأعلاف (FCR).

البروبيوتيك هي كائنات مجهرية قابلة للحياة والتي توفر آثارمفيدة لمضيفها عن طريق تعديل ميكروبيوتا المعوية (فاتوفي وماتانمي, 2011). في تغذية الماشية، العصيات، المكورات المعوية وSaccharomyces هي الكائنات الحية الأكثر شيوعا المستخدمة (سيمون، Jadamus، وفاهيجين، 2001). يتضمن أسلوب عمل البروبيوتيك في الدواجن الحفاظ على البكتيريا المعوية الطبيعية من خلال العداء الاستبعادي التنافسي ، وخفض درجة الحموضة من خلال التخمير الحمضي ، والتنافس على التعلق المخاطي والمواد المغذية ، وإنتاج البكتيريا ، وتحفيز الجهاز المناعي المرتبط بالأمعاء وزيادة إنتاج الأحماض الدهنية قصيرة السلسلة (Sarangi et al.، 2016). كل من بيغوسلييف، ميرفي، أوينز، جورج، وماكانين (2008) وأغبولا وآخرون. (2015) وقد أبلغت عن الآثار المفيدة للإضافات الغذائية (الأحماض العضوية والبروبيوتيك) على استخدام الطاقة والبروتين في الدواجن. كلا المكونين قادران على تعديل البكتيريا التي يمكن أن تكون أصل مرض GI وتفضيل البكتيريا المعوية صحية (Çelik, Mutluay, & Uzatici, 2007; كونواي ووانغ، 1997؛ يوسف، مصطفى، وعبد الوهاب، 2017). ومع ذلك، هناك ندرة في المعلومات حول فعالية الجمع بين الأحماض العضوية والبروبيوتيك وكان الهدف من هذه الدراسة لتقييم تأثيرها وحدها ومجتمعة على أداء النمو، هضم المغذيات، وأنشطة الإنزيم، مورفولوجيا الأمعاء والبكتيريا الأمعاء في الفراريج. النتائج العملية من هذه الدراسة قد تساعد على تحسين إنتاج الدجاج المشوي.

2 مواد وأساليب

2.1 نموّ أداء

تم وزن ما مجموعه 1440 فراخ مباة عمرها يوم واحد (Ross308) بشكل فردي وتم تعيينها عشوائيًا في أربع مجموعات. وتحتوي كل مجموعة على خمس نسخ متماثلة، مع 72 فراخ لكل تكرار (36 ذكراً و36 أنثى). تمت تربية الفراخ على مرحلتين (مرحلة البداية، أيام 0-21 ومرحلة المزارع، أيام 22-35). وقد صيغ تكوين المغذيات لكل من مرحلتي البداية والمزارعين ليكون مماثلاً لمتطلبات الطيور وفقاً لتوصيات المجلس النرويجي للاجئين (1994) كما هو مبين في الجدول 1. تم استكمال هذا النظام الغذائي التحكم (CD) مع 2 غرام / كجم الأحماض العضوية (CDOA، 1 كجم تحتوي على 320 غرام حمض الفوماريك، 30 غرام حمض الفورميك، 130 غرام حمض اللاكتيك، 30 غرام حمض بروبيوني و 10 غرام حمض الستريك)، 2 غرام / كغ البروبيوتيك (CDP، 1 كجم تحتوي على 30 غرام جراثيم عصيات, عصيات العد 5 × 1011 CFU/kg, 620 غرام منتجات التخمير المجففة ووسائل الإعلام الغذائية, 347 غرام كبريتات الصوديوم و 3 ز عامل anticaking) أو مزيجمن (CDOAP, 2 غرام / كغ الأحماض العضوية و 2 غرام / كغ البروبيوتيك). تمت تربية الفراخ لكل من مرحلتي البداية والمزارع في نظام مفتوح وتغذية libitum الإعلاني مع القرص المضغوط القاعدي أو الوجبات الغذائية التجريبية. كانت مياه الشرب متاحة للليبيتوم الإعلاني طوال التجربة. تغذية الكتاكيت إما القرص المضغوط أو الوجبات الغذائية التجريبية وزنها 21 و 35 يوما بعد بدء التجربة. تم تسجيل مدخول الأعلاف (FI) وزيادة وزن الجسم (BWG) واستخدامها لحساب FCR لكل فرخ. وللكفاءة الاقتصادية، تم أيضا تقييم تكلفة الأعلاف وتكلفة الإنتاج وإجمالي تكلفة التغذية للوجبات الغذائية التجريبية. تم تسجيل معدل وفيات الفراخ طوال التجربة ، وكانت جميع العلاجات متشابهة وكان لها بقاء 98.35 ٪ (في المتوسط) في نهاية الفترة التي تمت دراستها. تم استعراض جميع البروتوكولات التجريبية التي تصف إدارة الحيوانات ورعايتها في هذه الدراسة والموافقة عليها من قبل لجنة رعاية الحيوانات واستخدامها التابعة لمعهد الحيوانات لتنمية الأغراض العلمية، المجلس الوطني للبحوث في تايلاند (القانون U1-01783-2558).

الجدول 1 – ما إذا كانت هناك المكون والتركيب الكيميائي للوجبات الغذائية القاعدية المستخدمة لتغذية فراخ الفراريج
المكون والتركيب النظام الغذائي القاعدي
مرحلة البدء مرحلة المزارعين
  1. علي

    تتبع premix المعدنية, 1 كجم من النظام الغذائي يحتوي على 149.6 ملغ من المنغنيز, 125.1 ملغ من الزنك, 16.5 ملغ من الحديد, 1.7 ملغ من النحاس, 1.05 ملغ من اليود, 0.25 ملغ من السيلينيوم, الحد الأدنى من 6.27 ملغ من الكالسيوم وبحد أقصى 8.69 ملغ من الكالسيوم. الناقل هو كربونات الكالسيوم، وpremix يحتوي على أقل من 1٪ من الزيوت المعدنية.

  2. ب

    فيتامين premix, 1 كجم من النظام الغذائي الواردة 11,023 وحدة دولية من فيتامين (أ), 3,858 وحدة دولية من فيتامين D3, 46 وحدة دولية من فيتامين E, 0.0165 ملغ من B12, 5.845 ملغ من الريبوفلافين, 45.39 ملغ من النياسين, 20.21 ملغ من حمض D-بانتوثينيتش, 477.67 ملغ من الكولين, 1.47 ملغ من الميناديون, 1.75 ملغ من حمض الفوليك, 7.17 ملغ من البيريدوكسين, 2.94 ملغ من الثيامين و 0.55 ملغ من البيوتين. الناقل هو هياكل الأرز المطحون.

المكون (ز/كغ)
الذره 510 530
نخالة الأرز 100 100
وجبة فول الصويا 264.3 243.5
وجبة السمك 60 60
زيت النخيل 36.6 41.6
فوسفات ثنائي الكالسيوم 9.5 6.9
الحجر الجيري 9.3 8.1
كلوريد الصوديوم 3.5 3.5
مينالسا 2.5 2.5
فيتامينات ب 2.5 2.5
DL-ميثيونين 1.8 1.4
تكوين محسوب (ز/كغ)
البروتين الخام 215 200
الكالسيوم 10 9
الفوسفور غير النباتي 4.5 4
ليسين 11.5 10.7
الميثيونين 5.5 5.0
الطاقة القابلة للاستقلاب (MJ/kg) 12.4 12.8

2.2 هضم المغذيات

في اليوم 35، تم اختبار ما مجموعه 20 فراخ ذكر مع أوزان مماثلة في الجسم لقياس هضم علاجاتهم الغذائية (ن = 5 لكل علاج). تم تعيين جميع الكتاكيت بشكل عشوائي في أقفاص التمثيل الغذائي الفردية (عرض 40 سم × 40 سم طول × 45 سم الارتفاع). تم تخصيص العلاجات الغذائية في مرحلة المزارعين الأربعة بشكل عشوائي للأقفاص الفردية لفترة إجمالية قدرها 8 أيام ، تتكون من 5 أيام من تأقلم النظام الغذائي تليها 3 أيام تم خلالها قياس هضم الأعلاف. خلال الأيام من 40 إلى 42 ، تم جمع جميع الإفرازات من كل قفص وتم قياس إجمالي FI لكل قفص على حدة. تم جمع الفضلات من الأقفاص الأيضية ، التي تم وزنها بشكل منفصل كل يوم خلال فترة جمع العينات ، في صواني بلاستيكية وتخزينها في ثلاجة عميقة حتى تصبح مطلوبة للتحليل (Kirkpinar ، Açikgöz ، Bozkurt ، و Ayhan ، 2004). وفي نهاية فترة التجميع التي استغرقت ثلاثة أيام، كانت الفضلات من كل عملية تكرار مختلطة، ثم أخذت عينات أرضية وتمثيلية لتحديد التركيب القريب وفقا لأساليب AOAC (2000). وحددت الإجراءات المستخدمة في تحديد المواد الجافة والمغذيات وفقا للأساليب التي وصفها بانيرجي (1978).

2.3 استخراج الإنزيم الهضمي

تم استخدام نفس العينة الكتاكيت من دراسات الهضم لالفحص نشاط الإنزيم الهضمي (ن = 5 لكل علاج) في سن 42 يومًا. تم التضحية بكل طائر بسبب خلع عنق الرحم ، وتم تشريح الفرينمنت من الفراخ. تمت إزالة المقاطع المعوية بعناية، وتحديدها وتشريحها على الجليد على النحو التالي: الاثني عشر (مقسمة من gizzard إلى القنوات البيلية pancreo)، jejunum (مقسمة من القنوات pancreo-biliary إلى diverticulum Meckel) وileum (مقسمة من diverticulum Meckel إلى تقاطع ileo-caecal). لاستخراج إنزيمات الجهاز الهضمي المشوي وقياس تركيز البروتين، تم وزن البروفتريكولي المجمدة والأمعاء (بما في ذلك الاثني عشر، jejunum وileum) ، مقطعة إلى قطع صغيرة ثم متجانسة في 0.2 M الفوسفات الحاجز درجة الحموضة 7 (1:5 ث / في)، وذلك باستخدام microhomogenizer (THP220؛ أومني إنترناشيونال، كينيساو، الجمعية العامة، الولايات المتحدة الأمريكية). تم طرد المتجانس في 13000 × غرام، عند 4 درجات مئوية لمدة 20 دقيقة، وتم إعداد العليوات التي تم الاحتفاظ بها عند -20 درجة مئوية حتى الاستخدام. تمت مقارنة تركيز البروتين من مستخلص إنزيم خام إلى منحنى قياسي من ألبوم مصل البقري (BSA)، ضمن نطاق خطي، وفقا للطريقة القياسية للوري، روزنبرو، فار، وراندال (1951).

2.4 الأنزيم الهضمي المقالات

تم استخدام مستخلص بروفنتريكولوس فقط لمراعاة نشاط البيبسين (EC 3.4.23.1) في حين تم استخدام ثلاثة مستخلصات معوية للتقليل من أنشطة التربسين (EC 3.4.21.4) ، قياس القُمو Psin (EC 3.4.21.1) ، α-الأميليز (EC 3.2.1.1) ، cellulase (EC 3.1.1.4) والليباز (EC 3.1.1.3). وأجريت جميع التحليلات عند درجة حرارة 37 درجة مئوية مع درجة الحموضة المفضلة على النحو المبين في التقارير السابقة (غابرييل، ماليه، ولوكونت، 2003؛ غلهككاندي وآخرون، 2011؛ جانغ، كو، كانغ، ولي، 2007؛ محمود، خان، سروار، نيسا، 2008؛ شين، هان، جي، كيم، ولي، 2008). تم اسيد نشاط البيبسين باستخدام الكيسين كركيزة ، وفقًا لطريقة Rungruangsak و Utne (1981). تم استخدام معيار L-التيروسين ضد امتصاص المنتج المحرر في 720 نانومتر. وكانت أنشطة التربسين وchymotrypsin assayed باستخدام N-benzoyl-L-Arg-p-nitroanilide و N-succinyl-Ala-Ala-Pro-Phe-p-nitroanilide كركائز، على التوالي، وفقا للطريقة التي وصفها رونغرانجساك-توريسن، موس، أندريسن، بيرغ، وواغبو (2006). تم اتخاذ تحديد اللون من ف نيتروانيلدي في 410 نانومتر ضد المنتج المحرر. تم تحديد أنشطة α-amylase وcellulase باستخدام النشا القابل للذوبان وcarboxymethylcellulose كركائز ، وفقًا لطريقة Areekijseree وآخرون. (2004) ومندلس وفيبر (1969) على التوالي. تم قياس تركيز المنتجات كميا مقابل المالتوز القياسية والجلوكوز، على التوالي، في 540 نانومتر. تم تحديد نشاط ليباز وفقًا لطريقة وينكلر وستوكمان (1979) باستخدام pnitrophenyl palmitate كركيزة. تم قياس الكشف عن الألوان في 410 نانومتر مقابل النطاق الخطي القياسي للنيتروفينول ف.

2.5 الخصائص الحرارية إفراز

تم رصد العناصر القابلة للهضم (درجة حرارة منخفضة) وغير قابلة للهضم (درجة حرارة عالية) بعد الهضم والامتصاص من خلال الخصائص الحرارية للإفراز (Kanghae et al., 2017; واتناكول، ثونغبراغاجو، سونغنوي، ساتخاراك، وكانغاي، 2017). تم جمع إفراز شواية طازجة (n = 5 لكل علاج) من الصواني خلال الأيام ال3 الأخيرة قبل نهاية التجربة. تم تحديد الخصائص الحرارية للإفراز وفقًا للطريقة التي وصفها واتاناكول وآخرون. (2017) مع تعديلات طفيفة. تم وضع عينة من ثلاثة ملليغرام في مقلاة من الألومنيوم، مختومة، وسمح لها بالاعتدال في درجة حرارة الغرفة ثم تسخينها من 20 إلى 500 درجة مئوية بمعدل 10 درجة مئوية/دقيقة، مقابل مقلاة مرجعية فارغة. تم تحديد المعلمات الحرارية، من حيث البداية (إلى)، الذروة (Tp) ودرجات الحرارة (Tc) وenthalpy (ΟH)، باستخدام مقياس السعرات الحرارية المسح الضوئي التفاضلي (DSC7؛ بيركين إلمر، والثام، ماجستير، الولايات المتحدة الأمريكية).

2.6 علم التشريح المعوي والبكتيريا الهضمية التهم

وفي اليوم 35، تم اختيار ما مجموعه 80 فراخ تتكون من 20 فراخ (10 ذكور و 10 إناث) لكل علاج بشكل عشوائي. تم التضحية بالفراخ بسبب خلع عنق الرحم، وتم جمع جزء عشري بطول 2 سم من كل الأمعاء الدقيقة، وإصلاحه في سائل بوين، وتجفيفه بتسلسل الكحول التولوين القياسي، وجزءاً لا يتجزأ من شمع البارافين. تم إعداد شرائح خمسة ميكرومتر وملطخة بالهيماتوكسيلين والإيوسين. تم قياس الزغب المعوي مع سراديب Lieberkühn من كل شريحة بشكل فردي في 70 حقلًا مجهريًا باستخدام نظام تحليل الصور. كما حُسبت نسبة ارتفاع الفيلوس إلى عمق سرداب لكل شريحة (Santin et al., 2001).

تم جمع عينات Digesta من الإيليوم والكاكوم. تمت إزالة الكائنات الدقيقة الملوثة عن طريق غمر عينة السطح في 70:100 (v/v) الإيثانول، ثم غمرها في الماء المقطر المعقم لمدة 30 ق (Ghanbari، رضائي، جامي، ونزاري، 2009). تم تعليق العينات (1:10 ث / v) في محلول محلول ملاخطعادي عادي (0.85:100 ث / v) وتم تجانسها على خلاط مختبر Stomacher لمدة دقيقة واحدة ثم 10 أضعاف مخففة بشكل متسلسل. تم مطلي 100 ميكرولتر من التخفيف على إيوسين ميثيلين الأزرق أجار (EMB) وكذلك Lactobacilli MRS Agar (MRS). تم احتضان لوحات الإدارة الانتخابية في 37°C لمدة 18 ساعة. تم احتضان MRS agar في 37°C لمدة 48 ساعة تحت شرط اللاهوائية. تم عد البكتيريا اللاكتوباكيلي والقولونية باستخدام عداد مستعمرة. تم التعبير عن النتائج على أنها log10 من وحدات تشكيل المستعمرة (CFU) لكل غرام من المحتوى.

2-7 التحليل الإحصائي

وقد تم تحليل جميع البيانات التي تم الحصول عليها في تصميم معشا تماما باستخدام إجراء PROC UNIVARIATE (SAS 2015 الإصدار 9.4; معهد SAS، كاري، NC، الولايات المتحدة الأمريكية. وأجريت التحليلات الإحصائية باستخدام ANOVA أحادية الاتجاه لجميع النتائج. تم تحليل آثار المكملات الغذائية على أنشطة الإنزيم الهضمي في أجزاء مختلفة من الجهاز الهضمي باستخدام ANOVA في اتجاهين مع العلاج وشرائح الأمعاء وتفاعلاتها كعوامل. تم فصل الوسائل من قبل اختبار دنكان متعدد المدى (دنكان، 1955). وقد أُعرب عن التباين في البيانات على أنه الخطأ القياسي المجمع، واعتُبرت النتائج ذات أهمية إحصائية حيثما كان p< .05.

3 نتائج

3.1 نموّ أداء وفعالية اقتصاديّة

لم تكن هناك اختلافات كبيرة (أي p >.05) استنادًا إلى العلاجات الغذائية في أداء النمو خلال مرحلة البدء أو مرحلة المزارعين (الجدول 2). لا الأحماض العضوية ولا البروبيوتيك وحدها ولا مزيجها أثرت FI, BWG و FCR, وكانت غالبية البيانات مماثلة لجميع العلاجات. ومع ذلك ، خلال مرحلة البداية (الأيام 0-21) ، أظهرت الكتاكيت التي تتغذى على CDOA و CDP و CDOAP أعلى قليلاً من BWG و FCR من تلك التي يتم تغذيتها على القرص المضغوط على الرغم من أن الفرق لم يكن كبيرًا (p > .05). كان FC و FCP و TFC من الوجبات الغذائية التجريبية عالية نسبيًا في علاجات CDOAP و CDP تليها CDOA ، نسبة إلى القرص المضغوط (الجدول 2).

الجدول 2 – ما إذا كانت هناك أداء النمو من الفراريج تغذية العلاجات الغذائية المختلفة
الفترة (اليوم) المعلمه العلاج Sem ع-القيمة
القرص المضغوط CDOA Cdp CDOAP
  1. مؤتمر نزع السلاح، نظام غذائي السيطرة؛ CDOA, نظام غذائي التحكم المكمل مع الأحماض العضوية; CDP, نظام غذائي التحكم المكمل مع البروبيوتيك; CDOAP, نظام غذائي التحكم المكمل مع الأحماض العضوية والبروبيوتيك; FI، مدخول الأعلاف؛ BWG، زيادة وزن الجسم؛ FCR، نسبة تحويل الأعلاف؛ FC، تكلفة التغذية؛ FCP، تكلفة الأعلاف من الإنتاج؛ TFC، إجمالي تكلفة الأعلاف.

  2. علي

    FCP (USD/kg) = تكلفة التغذية × FCR.

  3. ب

    TFC (الدولار الأمريكي / إجمالي الربح) = كاتب (كسب × FCP) + مزارع (كسب × FCP).

0–21 FI (ز/ب) 692.53 689.95 689.99 694.44 6.22 .619
BWG (ز/ب) 449.80 471.84 458.35 450.30 25.03 .489
FCR 1.54 1.46 1.52 1.55 0.08 .368
FC (الدولار الأمريكي/كجم) 0.53 0.54 0.55 0.56
FCP (الدولار الأمريكي /كجم) أ 0.82 0.79 0.84 0.87
22–35 FI (ز/ب) 881.09 880.16 885.53 890.86 34.36 .958
BWG (ز/ب) 823.59 775.02 779.55 773.85 31.45 .068
FCR 1.06 1.13 1.13 1.15 0.05 .078
FC (الدولار الأمريكي/كجم) 0.52 0.53 0.55 0.55
FCP (الدولار الأمريكي /كجم) أ 0.56 0.60 0.62 0.63
0–35 FI (ز/ب) 1,573.63 1,570.11 1,575.53 1,585.30 34.45 .909
BWG (ز/ب) 1,273.39 1,246.86 1,237.91 1,224.15 39.90 .292
FCR 1.30 1.30 1.32 1.35 0.04 .395
FCP (الدولار الأمريكي /كجم) أ 0.65 0.67 0.70 0.72
TFC (الدولار الأمريكي / إجمالي الربح 0.83 0.84 0.87 0.89

3.2 هضم المغذيات

لم تختلف معاملات الهضم للمادة الجافة والبروتين الخام واستخراج الأثير والرماد ومستخلص النيتروجين بشكل كبير في الفراخ التي تتغذى على علاجات مختلفة (p > .05، الجدول 3). ومع ذلك، فإن هضم الألياف الخام في الكتاكيت التي تتغذى على CDOA و CDOAP أظهرت هضم ألياف أعلى بكثير من تلك الموجودة في الكتاكيت تغذية القرص المضغوط (p< .05) for the period from 35 to 42 days.

الجدول 3 – ما إذا كانت هناك معاملات الهضم من الفراريج تغذية العلاجات الغذائية المختلفة
المعلمه العلاج Sem ع-القيمة
القرص المضغوط CDOA Cdp CDOAP
  1. مؤتمر نزع السلاح، نظام غذائي السيطرة؛ CDOA, نظام غذائي التحكم المكمل مع الأحماض العضوية; CDP, نظام غذائي التحكم المكمل مع البروبيوتيك; CDOAP, نظام غذائي التحكم المكمل مع الأحماض العضوية والبروبيوتيك.

  2. يشار إلى اختلافات كبيرة في كل صف من قبل superscripts مختلفة (ع< .05).

المادة الجافة 0.88 0.87 0.86 0.87 3.15 .833
البروتين الخام 0.75 0.75 0.74 0.76 3.74 .875
استخراج الأثير 0.77 0.76 0.76 0.78 5.00 .862
الألياف الخام 0.70b 0.75أ 0.72ab 0.76أ 3.16 .030
الرماد 0.74 0.74 0.72 0.75 3.81 .727
استخراج خالية من النيتروجين 0.83 0.84 0.82 0.83 4.46 .962

3.3 أنشطة محددة من الإنزيمات الهضمية

مكملات مع البروبيوتيك أو الأحماض العضوية وحدها أو في تركيبة لم يكن لها أي تأثير على الأنشطة المحددة لأي من الإنزيمات الملاحظة ولا على نشاط معين من الأميليز لالتربسين, نسبة A /T (الجدول 4). وكانت الأنشطة المحددة من التربسين، chymotrypsin والأميليز أعلى في الاثني عشر تليها jejunum وileum. ولوحظ الاتجاه العكسي للخلية، التي كان أعلى نشاط محدد لها في الإيليوم. لم تكن هناك اختلافات كبيرة (p >.05) في النشاط الخاص بالليباز ولا في نسبة A / T عبر الأجزاء المعوية الثلاثة. استنادا إلى ANOVA في اتجاهين، لم يكن هناك أي تأثير على نسبة A / T أو أنشطة الإنزيم الهضمي من المكملات الغذائية وحدها ولا في تركيبة مع الجزء المعوي الذي تم أخذ القياس، في حين أن شرائح الأمعاء وحدها كان كبيرا (ع< .05) effects on all the observed enzymes, except for lipase and the A/T ratio.

الجدول 4 – ما إذا كانت هناك أنشطة محددة (بروتين mU/mg) من إنزيمات هضم البروتين والكربوهيدرات والدهون في جزء مختلف من الجهاز الهضمي المشوي
عامل بروفنستريتوس الامعاء
بيبسين التربسين شيموتتريبسين الاميليز سيلولاس ليباز الأميليز: نسبة التربسين
  1. مؤتمر نزع السلاح، نظام غذائي السيطرة؛ CDOA, نظام غذائي التحكم المكمل مع الأحماض العضوية; CDP, نظام غذائي التحكم المكمل مع البروبيوتيك; CDOAP, نظام غذائي التحكم المكمل مع الأحماض العضوية والبروبيوتيك.

  2. ويشار إلى اختلافات كبيرة في كل عمود من قبل superscripts مختلفة (ع< .05).

العلاج
القرص المضغوط 12.83 4.24 3.79 2,294.41 450.08 167.70 591.69
CDOA 10.79 3.98 3.27 2,398.38 434.16 132.80 694.61
Cdp 10.23 5.65 4.66 2,257.42 406.95 146.18 490.06
CDOAP 11.21 4.37 3.42 2,158.19 487.84 129.81 533.24
Sem 1.45 0.63 0.85 210.68 21.93 25.01 59.42
الجزء
دودينوم 5.75أ 5.85أ 2,424.99أ 400.25b 114.03 536.50
ججونوم 4.41ab 3.84أ 2,558.96أ 429.36ب 155.32 656.04
إيليوم 3.53b 1.67b 1,847.20b 504.66أ 163.03 539.66
Sem 0.54 0.74 182.45 18.99 21.65 51.46
ع-القيمة
العلاج (T) 0.628 0.253 0.666 0.881 0.082 0.700 0.098
الجزء (S) 0.021 0.001 0.019 0.001 0.238 0.184
T × S 0.483 0.290 0.227 0.375 0.293 0.679
 
 
 
 

3.4 الخصائص الحرارية للإفراز

لم تتأثر الخصائص الحرارية للمغذيات المتاحة الموجودة في البراز ، من حيث To و Tp و Tc و Tc -To و ΟH ، بمكملات غذائية مع البروبيوتيك أو الأحماض العضوية وحدها أو في تركيبة (الجدول 5).

الجدول 5 – ما إذا كانت هناك خصائص الانتقال الحراري للبراز التي تم جمعها من الفراريج عند التحكم في تغذية أو الوجبات الغذائية التجريبية، وتكملها البروبيوتيك أو الأحماض العضوية وحدها أو في تركيبة
المعلمة الحرارية العلاج Sem ع-القيمة
القرص المضغوط CDOA Cdp CDOAP
  1. مؤتمر نزع السلاح، نظام غذائي السيطرة؛ CDOA, نظام غذائي التحكم المكمل مع الأحماض العضوية; CDP, نظام غذائي التحكم المكمل مع البروبيوتيك; CDOAP, نظام غذائي التحكم المكمل مع الأحماض العضوية والبروبيوتيك; إلى, بداية درجة الحرارة; TP، درجة الحرارة القصوى؛ Tc، درجة الحرارة الاستنتاج؛ Tc-to، نطاق درجة الحرارة؛ ΟH، الانتقال enthalpy.

إلى (°C) 91.90 89.47 98.01 91.02 3.39 .344
TP (°C) 112.13 111.75 111.67 112.29 3.17 .999
Tc (°C) 131.21 133.56 132.44 135.42 3.65 .867
Tcto (°C) 39.31 44.09 34.44 44.40 4.15 .325
ΟH (J/g) 1,550.11 1,543.21 1,503.18 1,551.12 11.39 .365

 

Qvetech.com

Open chat
1
Need help?
Hello
Can we help you?